技術支持
致力于引進國外先進技術,為廣大科研工作者和醫療機構提供高質量 的科研技術支持 。
怎樣處理特殊大小的細胞?
有的細胞特別大或特別小,特別是一些原代細胞,還有的細胞成團無法計數。對于這種細胞,從預實驗開始就會有所不同。預實驗時,保持感染時細胞的匯合率達到30~40%,即使細胞沒有預定的10000 個/孔的數目,正式實驗的細胞匯合率應盡量控制在這個數量。對于成團的細胞,如胰島細胞,胚胎干細胞等,應注意細胞團的數目和大小,以便以后的實驗按比例放大。
加入病毒后,目的細胞死亡很多,為什么?
Lentivirus可能對您的目的細胞有一定的毒性,請調整并降低感染的MOI值,并且在感染4 h、8 h、12 h后對細胞進行換液,用新鮮的完全培養液繼續培養觀察。
目的細胞可以被Lentivirus感染,但是GFP熒光強度很低,為什么?
目的細胞中GFP熒光強度取決于病毒感染細胞的顆粒數、細胞本身的增殖狀態、細胞類型以及觀察時間等。一般來講,目的細胞感染病毒顆粒數越多,細胞本身增殖越快,GFP熒光會較強。Lentivirus屬于慢病毒,一般在增殖較快的細胞中病毒感染48~72h后,GFP基因表達才達到高峰。對于增殖較慢的細胞,GFP基因表達時間還會延長。
Lentivirus對目的細胞的感染效率很低,如何提高病毒的感染效率?
一般我們通過提高MOI值來提高病毒的轉染效率,必要時可在培養液中加入Polybrene (4~10 μg/mL)來提高病毒的感染率。同時,目的細胞良好的生長狀態是獲得正常感染效率的保證。
常見細胞推薦的MOI
常見細胞推薦的MOI
Lentivirus在細胞水平的使用
艾基提供的Lentiviral Vector Particle為VSVG膜蛋白包裹的,雖然與其他的膜蛋白相比,它能夠感染的細胞種類大大增加,但是對不同的細胞和組織的感染性仍有差別。在使用Lentivirus之前請查閱相關文獻,了解這種Lentivirus對目的細胞的親嗜性,復感染指數(MOI值)以及在體內(in vivo)注射所需要的病毒量。如果沒有相關文獻支持,則需要檢測病毒對目的細胞的親嗜性。實際上即使有文獻支持,但因為不同實驗的細胞代數,個體差異,細胞狀態的關系,細胞實際的MOI和文獻報道的往往會有差異。因此,正式實驗前一般會安排預實驗,以了解細胞所需MOI以及病毒對細胞狀態和傳代的影響。1. 目的細胞感染預實驗 說明:MOI值:感染復數或…
Lentivirus使用安全注意事項
艾基提供的慢病毒載體屬于“第二代”慢病毒載體,其基因組的3’ LTR的增強子功能發生了缺失,從而形成了所謂的“自滅活”(Self-inactivation,SIN),即該病毒基因組整合到細胞基因組后,不會產生新的子代病毒,也降低了對周圍基因的意外激活,因此具有較好的安全性。但該病毒仍然具有可能的潛在的生物學危險,所以建議不要使用編碼已知或可能會致癌的基因的假型病毒。除非已經完全公認某個基因肯定沒有致癌性,否則均不建議采用假型病毒進行生物學實驗,如有疑問,請與我們聯系。使用時請參照如下所示進行實驗:1. 病毒操作時請使用生物安全柜(BSL-2)。2. 病毒操作時請穿實驗服,戴口罩和手套。3. 操作病毒時應小心,避免…
Lentivirus的儲存與稀釋
1. 收到病毒液后4℃保存(請于一周內用完),如需長期保存則存放于-80℃。避免反復凍融,否則會降低病毒滴度,一般病毒可以存放于-80℃約6個月。6個月后使用,請重新檢測病毒滴度。2. 艾基提供的Lentivirus溶于HBSS中 (pH7.4) 。病毒使用時,請將病毒從-80℃冰箱取出,冰浴融化,4℃存放。如有需要稀釋病毒,則可加入適量的HBSS混勻使用,也可以用培養液進行稀釋。3. “TU/mL”:Transducing Units,轉導單位,表示可以感染并進入到目標細胞群中的病毒基因組數。艾基提供的慢病毒單位標識為TU/mL時,即每毫升慢病毒溶液中含有具有生物活性的慢病毒顆粒數。如:病毒滴度>1×10∧8 TU/mL,即每毫升病毒液中至少含有1×10∧8個具有…
